В этом разделе Вы можете ознакомиться с регистрационными удостоверениями
препаратов и другими документами, а также распечатать их.




Цоликлоны Анти-А, Анти-В и Анти-АВ

Анти-D Супер

ЭРИТРОТЕСТ™-ЦОЛИКЛОНЫ по системам Резус и Kell

Письмо о лицензировании

Справка о сертификации

Регистрационное удостоверение "ЦОЛИКЛОН анти-D"

Регистрационное удостоверение "ЭРИТРОТЕСТтм-ЦОЛИКЛОН СМ"

Регистрационное удостоверение "ЭРИТРОТЕСТтм-АНТИ-ИГ"

Регистрационное удостоверение "ЭРИТРОТЕСТтм-ГРУППОКАРТ"

Регистрационное удостоверение "ЦОЛИКЛОН АНТИ-С СУПЕР"

Регистрационное удостоверение на Группоспот

МЕТОДИЧЕСКАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Существующие в России инструкции по определению групп крови в настоящее время устарели и не учитывают многих достижений современной трансфузиологии. В Гематологическом Научном Центре РАМН составлены методические рекомендации, учитывающие достижения мировой трансфузиологии, обобщенные Всемирной Организацией Здравоохранения и Американской Ассоциацией Банков Крови. Эти методические рекомендации представлены ниже.
МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ОПРЕДЕЛЕНИЮ ГРУПП КРОВИ АВО

Утверждены Директором
Гематологического
Научного Центра РАМН
Академиком А.И. Воробьевым
27.04.1999


Кровь каждого человека принадлежит к какой-либо из 4-х групп системы АВО в зависимости от присутствия на эритроцитах антигенов А и В и соответствующих антител анти-А и анти-В в плазме. В группе 0(1) отсутствуют оба антигена, в группе А(II) - на эритроцитах присутствует только антиген А, в группе В(III) - на эритроцитах присутствует только антиген В и в группе АВ(IV) - на эритроцитах одновременно присутствуют оба антигена - А и В. В норме у неиммунизированных людей в плазме имеются естественные антитела к отсутствующему антигену: у лиц группы 0(I) обнаруживаются антитела против обоих антигенов, А и В; у лиц группы А(II) - анти-В антитела; при группе В(III) - антитела анти-А и, наконец, при группе АВ(IV) антитела этой системы в плазме отсутствуют. В связи с тем, что совместимость по системе АВО наиболее важна при осуществлении гемотрансфузий, определение группы крови системы АВО необходимо определять перекрестным методом, т.е. по антигенам эритроцитов и по антителам в плазме (сыворотке). Параллельное исследование антигенов эритроцитов и агглютининов в сыворотке обязательно и у доноров, и у реципиентов. В случае переливания крови по жизненным показаниям можно определять группу реципиента только по антигенам эритроцитов, однако при этом обязательно проводится проба на индивидуальную совместимость сыворотки реципиента с эритроцитами донора. Следует иметь в виду, что существуют разновидности как антигена В, так и, в большей степени, антигена А. Наиболее частыми разновидностями А антигена являются А1 и А2. Антиген А2 встечается примерно у 20% среди людей групп А(II) и АВ(IV). При рутинном типировании нет необходимости в специальном выделении подгрупп А2(II) и А2В(IV), так как обычно у людей с антигеном А2 отсутствуют антитела против антигена А1 и им можно переливать кровь согласно общим правилам. Наличие таких “избыточных” антител выявляется при перекрестном определении группы крови и в пробе на индивидуальную совместимость. Частота встречаемости анти-А1 антител составляет у людей группы А2(II) 1-8% и у людей А2В(IV) - 22-35%. При обнаружении анти-А1 антител у таких лиц полезно подтвердить наличие антигена А2 специальными реагентами (моноклональный реагент против антигена А1 или лектин Dolichos biflorus), агглютинирующими только А1 эритроциты. Лицам групп А2(II) и А2В(IV) с анти-А1 антителами можно переливать эритроциты только с антигенами А2 или А2В, соответственно.

Агглютинины анти-А (альфа) и анти-В (бета) определяют в реакции прямой агглютинации стандартных эритроцитов А1 и В с исследуемой сывороткой.

Антигены исследуемых эритроцитов определяют в реакции прямой агглютинации с помощью стандартных реагентов, содержащих полные анти-А и/или анти-В антитела. Этими реагентами могут быть аллоиммунные сыворотки, полученные от иммунных доноров, или моноклональные антитела. Использование изогемагглютинирующих сывороток от неиммунных доноров не рекомендуется в связи с их недостаточной активностью в отношении слабых вариантов антигенов и нестандартностью.

Используемые стандартные реагенты должны быть сертифицированы по международным требованиям. Сертификация стандартов производится референс-лабораторией Гематологического Научного Центра один раз в год для каждого учреждения, изготавливающего типирующие реагенты. Каждая серия реагента стандартизуется этим учреждением по сертифицированному стандарту. Стандарты должны удовлетворять следующим требованиям: 1). быть специфичными; 2). иметь титр в пробирочном тесте не ниже 1:1024 для реагентов анти-А и анти-В с эритроцитами А1 и В, соответственно; 3). иметь титр в пробирочном тесте не ниже 1:256 для реагента анти-А с эритроцитами А;. 4). вызывать четкую агглютинацию на плоскости в течение 2-3 секунд после смешивания реагентов с отмытыми эритроцитами А1 или В и не позднее 5 секунд после смешивания с отмытыми эритроцитами А2.

Группа крови у доноров определяется врачом или лаборантом 2 раза: один раз при первичном обращении донора и второй раз при зачислении в доноры. Результаты обоих определений записываются на лицевой стороне донорского журнала с указанием даты и за подписью лиц, определявших группу крови. В дальнейшем группа крови определяется перед каждой кроводачей.

Группа крови у реципиентов определяется сертифицированным врачом-трансфузиологом или специально обученной медсестрой. Результаты определения группы крови записываются в правом верхнем углу лицевого листа истории болезни с указанием даты и за подписью специалиста, производившего определение. Определение группы крови повторяют перед трансфузией.
Определение группы крови АВО перекрестным методом.


I. Определение антигенов А и В эритроцитов иммунными поликлональными сыворотками или моноклональными реагентами.

Типирование крови должно проводиться двумя сериями реагентов анти-А и анти-В, либо одной серией каждого реагента, если используется и реагент анти-АВ, который является дополнительным контролем правильности определения группы крови АВО реагентами анти-А и анти-В.
Определение проводится в помещении с хорошим освещением при температуре 15-25о. Для исследования используют цельную кровь, отмытые эритроциты, эритроциты в плазме, сыворотке или физиологическом растворе.
1. Отмаркируйте секции на пластинке или планшете, указав название реагента.
2. Нанесите по 1 большой капле (около 0,1 мл) каждого реагента: анти-А, анти-В и анти-АВ.
3. Нанесите по 1 маленькой капле (около 0,03 мл) исследуемой крови (эритроцитов) рядом с каждым реагентом.
4. Смешайте отдельными чистыми стеклянными палочками каждую каплю крови (эритроциты) с соответствующим реагентом.
5. Мягко покачивайте пластинку. Несмотря на то, что при использовании стандартных реагентов четкая агглютинация наступает уже в первые секунды, результаты реакции учитывайте через 3 минуты после окончания смешивания, чтобы не пропустить слабые формы антигенов.
6. Запишите результаты реакции немедленно после определения.

II. Определение агглютининов анти-А и анти-В в сыворотке крови со стандартными эритроцитами.

В качестве стандартных эритроцитов следует использовать эритроциты от доноров групп А1 и В. Эритроциты хранят в холодильнике не более недели. В специальном консерванте срок хранения эритроцитов может быть увеличен. Не допускается использование лизированных эритроцитов. Можно использовать эритроциты от одного заранее типированного донора (для каждой группы), либо смесь эритроцитов от 2-3 доноров (для каждой группы).
1. Приготовьте 5% взвесь в физрастворе однократно отмытых в физрастворе стандартных эритроцитов.
2. Поместите в 2 маркированные пробирки по 2 капли исследуемой сыворотки (плазмы).
3. Добавьте 1 каплю 5% взвеси эритроцитов группы А в пробирку А и каплю эритроцитов группы В в пробирку В, тщательно смешайте и проинкубируйте при комнатной температуре 5 минут.
4. Центрифугируйте пробирки при 2000 об/мин в течение 30 секунд (рекомендуется подобрать оптимальное время и скорость центрифугирования для используемой центрифуги так, чтобы осадок легко отделялся ото дна пробирки).
5. Покачивая пробирку, отслоите ото дна и мягко взболтайте осадок эритроцитов.
6. Определите наличие агглютинатов, просматривая пробирку на свет.
7. Запишите результаты определения.

III. Интерпретация результатов и установление группы крови

Результат реакции эритроцитов с реагентами: Результат реакции сыво-ротки со стандартными эритроцитами: Кровь принадлежит к группе:
анти-А анти-В анти-АВ
- - -
+ - +
- + +
+ + +
A1 B
+ +
- +
+ -
- -

0(I)
А(II)
В(III)
АВ(IV)

*Знаком плюс (+) обозначено наличие агглютинации, знаком минус (-) - отсутствие агглютинации.

IV. Расхождение результатов определения группы крови АВО по антигенам эритроцитов и агглютининам сыворотки.

Если результаты двух тестов не совпадают при исследованнии крови донора, то эта кровь не может быть использована для трансфузии, пока не будут установлены причины расхождения.

Если несовпадение относится к крови реципиента, которому необходимо срочное переливание крови, то ему нужно перелить кровь (эритроциты) группы 0(1), совместимую по резус-фактору.

Основные причины ошибок

1. Технические ошибки: использование загрязненного оборудования; неправильное соотношение сыворотки и клеток; чересчур сильное центрифугирование (ложноположительный результат); недостаточное центрифугирование (ложноотрицательный результат); загрязнение стандартных реагентов реагентами другой группы; проведение реакции при температуре выше 25о (ложноотрицательный результат); неправильная маркировка реагентов, эритроцитов, либо неправильная запись результатов.

2. Ошибки, связанные с аномальными свойствами тестируемых эритроцитов:
- слабые формы антигена А (чаще) или В. Сыворотка может содержать экстра-антитела, а соответствующий антиген на эритроцитах не выявляется. Необходимо провести повторное исследование эритроцитов, используя другие серии реагентов и другую лабораторную посуду. Целесообразно несколько раз отмыть исследуемые эритроциты и увеличить время регистрации реакции до 5 мин.. Если при повторном определении результаты не совпали, такая кровь должна быть направлена на исследование в специализированную серологическую лабораторию.
- полиагглютинабильность эритроцитов, когда все АВО реагенты вызывают одинаковую агглютинацию. В этом случае необходимо проверить, происходит ли агглютинация исследуемых эритроцитов в стандартной сыворотке АВ (IV) группы (если типирование осуществлялось иммунными сыворотками) или в физиологическом растворе (если использовали моноклоны). Обычно полиагглютинацию удается устранить повторным отмыванием эритроцитов.
- образование "монетных столбиков" может быть принято за агглютинацию. В этом случае при добавлении 1-2 капель физраствора и покачивании пластинки ложная агглютинация обычно исчезает.
- смешанная агглютинация (кровяная химера), когда часть эритроцитов собраны в агглютинаты, а остальные остаются свободными. Наиболее часто это наблюдается у больных групп А, В или АВ в течение 1-3 месяцев после переливания им больших объемов крови группы 0(1) или после трансплантации костного мозга группы 0(1); реже - у разногруппных близнецов. Тщательный анамнез быстро выявляет такую ситуацию.
- сенсибилизированные антителами и/или комплементом эритроциты при гемолитической болезни новорожденных, аутоиммунных и инфекционных заболеваниях. Такие эритроциты могут спонтанно агглютинироваться иммунными сыворотками. Повторите определение с моноклональными реагентами, поставьте прямую пробу Кумбса (см. ниже).

3. Ошибки, связанные с аномальными свойствами исследуемой сыворотки:
- стандартные эритроциты в присутствии исследуемой сыворотки образуют монетные столбики, что может быть принято за положительный результат. Добавление 1-2 капель физраствора в пробирку и мягкое покачивание обычно разрушает монетные столбики, но не истинные агглютинаты. Подтвердите аномальный результат реакции, повторив ее со стандартными эритроцитами группы 0(1).
- в сыворотке отсутствуют анти-А или анти-В антитела, что наблюдается у новорожденных, а также у пациентов с тяжелыми нарушениями иммунной системы. Заключение о группе крови делается по результатам исследования антигенов эритроцитов.
- в сыворотке присутствуют антитела другой специфичности или избыточные антитела (например анти-А1 у людей со слабым А2 антигеном). Результат пробы на совместимость (см. Методические рекомендации по проведению пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента) является в таких случаях единственным критерием для подбора крови.

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ОПРЕДЕЛЕНИЮ РЕЗУС-ПРИНАДЛЕЖНОСТИ КРОВИ

На эритроцитах человека имеются 5 основных антигенов системы резус (D, С, с, Е, е), из которых наиболее иммуногенным является антиген D [его полное обозначение - Rh0(D)]. Наличие или отсутствие этого антигена определяет резус-принадлежность крови: лица, содержащие D-антиген, принадлежат к группе резус-положительных (среди лиц белой расы их приблизительно 85%); лица, не содержащие D-антигена, относятся к резус-отрицательным (их, соответственно, около 15%).

Иммуногенность других (минорных) антигенов системы резус значительно ниже и убывает в следующем порядке: с>E>C>e. Определение минорных антигенов системы резус как правило производится при индивидуальном подборе крови для могократных трансфузий, в тех случаях, когда в сыворотке реципиента обнаружены иммунные антитела к антигенам системы резус, а также у женщин детородного возраста.

Антиген D имеет слабые варианты, объединяемые в группу Du, которая составляет около 1% популяции. Эритроциты Du слабо или вообще не агглютинируются полными анти-резус антителами в реакции прямой агглютинации. Для их определения следует использовать неполные анти-резус антитела в реакции агглютинации с антиглобулиновым реагентом (непрямая проба Кумбса). Кровь доноров и реципиентов тестируются по-разному на присутствие Du антигена.

Доноры, содержащие Du, должны быть отнесены к резус-положительным, так как переливание их крови сенсибилизированным к D-антигену резус-отрицательным реципиентам может вызывать тяжелые трансфузионные реакции. Кровь доноров должна обязательно тестироваться на присутствие Du и, в случае его обнаружения, быть отнесенной к резус-положительной.

Большинство резус-отрицательных лиц имеет фенотип dce, однако 2-5% лиц, не несущих на эритроцитах антигена D и резус-отрицательных по определению, имеют фенотип dCe илиdcE. Такие эритроциты могут вызывать иммунный ответ при переливании их реципиентам с группой dce, поэтому рекомендуется проводить тестирование крови резус-отрицательных доноров с анти-С и анти-Е (или анти-СЕ) реагентами.

Тестирование крови реципиентов на Du в непрямой пробе Кумбса не обязательно.

Определение резус-принадлежности крови.

Резус-принадлежность определяется в реакции агглютинации с помощью моноклональных реагентов или аллоиммунных анти-резус сывороток. Метод определения зависит от класса антител в реагенте: если в нем присутствуют полные антитела (класса IgM), то реагент используется для определения резус фактора методом прямой агглютинации в солевой среде; если в нем содержатся неполные антитела (класса IgG), то он используется в непрямом антиглобулиновом тесте, в реакции агглютинации в присутствии высокомолекулярных усилителей (альбумина, желатины и др.), или с эритроцитами, обработанными протеолитическими ферментами.

Независимо от используемого метода определения резус-принадлежности, обязательно проведение следующих контролей:
1. Со стандартными резус-положительными эритроцитами;
2. Со стандартными резус-отрицательными эритроцитами.

I. Реакция агглютинации на плоскости с помощью полных анти-D IgM антител.

Определение проводят в помещении с хорошим освещением. Наилучшие результаты тест дает при использовании высокой концентрации эритроцитов и температуре около 37о, поэтому желательно использовать подогретую пластинку. Для исследования используют цельную кровь, отмытые эритроциты, эритроциты в плазме, сыворотке, консерванте или физиологическом растворе.

а) Нанесите большую каплю (около 0,1 мл) реагента на пластинку или планшет.
б) Нанесите рядом маленькую каплю (около 0,03 мл) исследуемой крови (эритроцитов).
в) Тщательно смешайте реагент с кровью чистой стеклянной палочкой.
г) Через 10-20 секунд мягко покачайте пластинку. Несмотря на то, что четкая агглютинация наступает в первые 30 секунд, результаты реакции учитывайте через 3 минуты после смешивания.
д) Запишите результаты реакции немедленно после определения.

При наличии агглютинации исследуемая кровь маркируется как резус-положительная. Если агглютинация очень слабая или отсутствует, у доноров исследование обязательно проводят со вторым реагентом, содержащим IgG (неполные) анти-D антитела (см. пункт III) для уточнения принадлежности такого образца крови к группе Du. У реципиентов выявление Du с помощью неполных антител не обязательно. Следует, однако, иметь в виду, что слабая агглютинация на плоскости может наблюдаться с эритроцитами DuCe. Такому реципиенту нельзя переливать резус-отрицательную кровь, так как это может привести к сенсибилизации против антигена «с». В этом случае целесообразно проверить наличие С антигена у реципиента.

II. Реакция агглютинации с помощью неполных IgG анти-D антител в присутствии высокомолекулярных добавок.

Реакция проводится либо со специально приготовленным реагентом, уже содержащим усилитель (универсальный реагент с полиглюкином или альбумином для плоскости), либо усилитель добавляют в процессе проведения реакции (реакция конглютинации с желатином в пробирке).

1. Техника постановки реакции агглютинации на плоскости не отличается от описанной в пункте I. Однако универсальные реагенты могут давать ложноположительную реакцию с резус-отрицательными эритроцитами за счет содержащихся в них высокомолекулярных веществ, а также могут вызывать агглютинацию эритроцитов, покрытых антителами другой (не анти-резус) специфичности. Поэтому необходимо проведение параллельных тестов с контрольным раствором используемого усилителя, но без анти-D антител. Если контрольный раствор вызывает агглютинацию эритроцитов, то результаты тестирования не достоверны. Повторите определение с другим реагентом.

2. Реакция конглютинации с применением желатина. Для проведения этого теста могут быть использованы моноклональные реагенты и стандартные изоиммунные анти-резус сыворотки с неполными антителами. Необходимо проведение контроля с раствором желатина без анти-резус реагента.

а) Внесите 1 каплю (около 0,05 мл) исследуемой крови или взвеси эритроцитов (примерно 50%) в сыворотке.
б) Добавьте 2 капли (0,1 мл) 10% раствора желатина, предварительно подогретого до разжижения при 46-48о.
в) Добавьте 2 капли (0,1 мл) реагента анти-D и смешайте.
г) Поместите пробирку в водяную баню при температуре 46-48о на 5-10 минут или в суховоздушный термостат при той же температуре на 30 минут.
д) Долейте в пробирку 5-8 мл физраствора и осторожно 1-2 раза переверните закрытую пробкой пробирку для перемешивания.
е) Определите наличие агглютинатов, просматривая пробирку на свет невооруженым глазом или через лупу.
ж) Немедленно запишите результаты определения.

При положительном результате агглютинаты различимы в виде аггрегатов разной величины на прозрачном фоне - кровь является резус-положительной. При отрицательном результате в пробирке аггрегатов нет, а видна равномерно окрашенная непрозрачная взвесь эритроцитов - кровь является резус-отрицательной. Если наблюдается мелкозернистая вызывающая сомнение агглютинация, то кровь необходимо тестировать в непрямом антиглобулиновом тесте (см. пункт III). Результаты желатиновой пробы являются достоверными только в случае, когда сам желатин сам не вызывает агглютинации исследуемых эритроцитов, а результаты контролей со стандартными эритроцитами соответствуют ожидаемым. В случае неадекватных результатов определение резус-принадлежности следует повторить с использованием другого реагента или другого образца желатина. Если желатин вызывает сам по себе агглютинацию исследуемых эритроцитов, то можно предполагать наличие на них антиэритроцитарных антител анти-резус или иной специфичности (это наблюдается при гемолитической болезни новорожденных, аутоиммунной гемолитической анемии и некоторых инфекционных заболеваниях). В этом случае кровь должна быть направлена на исследование в специальную серологическую лабораторию.

III. Непрямой антиглобулиновый тест (непрямая проба Кумбса) с помощью неполных анти-D антител.

а) Приготовьте 2-5% взвесь трижды отмытых в физиологическом растворе исследуемых эритроцитов. Для этого поместите в пробирку 5 капель (около 0,25 мл) исследуемой крови, трижды отмойте в 5-10 мл физиологического раствора; суспендируйте осадок эритроцитов в 2-3 мл физиологического раствора или, предпочтительнее, в 2-3 мл раствора низкой ионной силы - LISS, в котором фиксация антител на эритроцитах прочнее и происходит быстрее, чем в физиологическом растворе.
б) Внесите 1 каплю анти-D реагента в чистую маркированную пробирку.
в) Добавьте 1 каплю 2-5% взвеси эритроцитов (пункт "а").
г) Инкубируйте смесь при 37о 30-45 минут (если эритроциты в физиологическом растворе) или 10-15 минут (если эритроциты в LISS).
д) Отмойте эритроциты 1 раз (в случае использования моноклонального реагента) или 3 раза (в случае использования иммунной анти-D сыворотки) большим объемом (5-10 мл) физиологического раствора. Однократная отмывка допустима только при использовании моноклональных реагентов. Полностью удалите физиологический раствор.
е) Добавьте к осадку 1 каплю антиглобулинового реагента и тщательно смешайте.
ж) Центрифугируйте 15-20 секунд при 900-1000g (примерно 2000-3000 об/мин).
з) Мягко ресуспендируйте осадок и визуально определите наличие агглютинации.
и) Немедленно запишите результаты определения.

При отсутствии агглютинации кровь считается резус-отрицательной, при положительной реакции - резус-положительной; подгруппы Du могут вызывать слабую агглютинацию даже в этом высокочувствительном тесте. Прежде чем отнести донора Du к резус-положительным, подтвердите заключение контрольным исследованием антиглобулиновой сыворотки со стандартными резус-отрицательными эритроцитами. Если контрольный тест положителен, интерпретация не является достоверной, и кровь такого донора не должна использоваться для трансфузий до окончательного выяснения его резус-принадлежности.

IV. Агглютинация эритроцитов, обработанных протеолитическими ферментами, с помощью неполных анти-D антител.

Неполные антитела способны вызывать прямую агглютинацию в солевой среде эритроцитов, обработанных бромелином, папаином, трипсином и др. протеазами. Этот метод высокочувствителен и надежен при выявлении слабых форм D антигена. Он используется главным образом при автоматическом определении групп крови в системах типа Группоматик, в которых обеспечивается стандартность обработки эритроцитов ферментами и специально подбирается нужное разведение реагента, так как для этого теста характерен феномен прозоны (ингибирование агглютинации избытком антител). При ручном определении групп крови метод может быть использован в специализированных серологических лабораториях в различных модификациях, что не дает возможности его полного описания в этих Методических рекомендациях.

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ПРОВЕДЕНИЮ ПРОБЫ НА ИНДИВИДУАЛЬНУЮ СОВМЕСТИМОСТЬ КРОВИ ДОНОРА И РЕЦИПИЕНТА

Целью пробы на индивидуальную совместимость является предотвращение трансфузий эритроцитов, несовместимых с сывороткой больного. Тестирование сыворотки реципиента с эритроцитами предполагаемого донора - наиболее надежный способ выявления антител, способных вызвать повреждение перелитых эритроцитов, посттрансфузионные реакции, в том числе и гемолитические. Проведение такой пробы позволяет: 1) подтвердить АВО совместимость донора и реципиента; 2) выявить наличие антител в сыворотке реципиента, направленных против антигенов эритроцитов донора.

Техника проведения пробы на индивидуальную совместимость.

Во всех случаях, кроме срочных трансфузий, проба проводится в два этапа: первый - без использования антиглобулинового реагента, второй - с антиглобулиновым реагентом или с использованием желатина. В случае использования желатина метод менее чувствителен. В случаях срочных трансфузий двухэтапное определение рекомендуется проводить с раствором низкой ионной силы (LISS).

Первый этап

1. Поместите 2 капли сыворотки реципиента в маркированную пробирку.
2. Добавьте 1 каплю 5% суспензии трижды отмытых эритроцитов донора в физиологическом растворе или в растворе низкой ионной силы LISS (фиксация антител происходит лучше в среде с низкой ионной силой, поэтому предпочтительнее взвесить эритроциты в растворе LISS, обычно поставляемом изготовителем вместе с антиглобулиновым реагентом).
3. Немедленно центрифугируйте при 2000 об/мин в течение 15-20 секунд.
4. Просмотрите супернатант на наличие гемолиза. Мягко покачивая пробирку, отделите клеточный осадок от дна пробирки и определите наличие агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов на этой стадии могут означать: а) несовместимость по системе АВО; б) присутствие в сыворотке реципиента полных антител не АВО специфичности, активных при комнатной температуре (анти-S, анти-Р1 , анти-M и др).

Второй этап с антиглобулиновым реагентом

5. Если гемолиз отсутствовал, а после встряхивания пробирки эритроциты образовали гомогенную суспензию, инкубируйте пробирку 30-45 минут (при использовании LISS время инкубации составляет 10-15 минут) при 37оС.
6. Центрифугируйте пробирку, как в пункте 3, и просмотрите супернатант на наличие гемолиза и агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов (после встряхивания пробирки) говорит о присутствии у реципиента полных тепловых антител против эритроцитов донора.
7. Если гемолиз и агглютинация отсутствуют, отмойте эритроциты 3-4 раза большим объемом (не менее 5 мл) физраствора (недостаточное отмывание может привести к инактивации антиглобулинового реагента остатком сыворотки и ложноотрицательному результату); удалите полностью физраствор после последнего отмывания.
8. Добавьте 1-2 капли антиглобулиновой сыворотки и тщательно смешайте.
9. Центрифугируйте пробирку, как в пункте 3, мягко разбейте осадок и просмотрите пробирку на наличие агглютинатов.
Качество антиглобулинового реагента гарантируется изготовителем. Не используйте реагент с истекшим сроком годности или после повторного замораживания-оттаивания. Полезно в качестве контроля (если у вас возникли сомнения в качестве реагента) провести антиглобулиновый тест со стандартными резус-положительными и резус-отрицательными эритроцитами (см. Методические указания по определению резус-принадлежности крови).

Второй этап при использовании желатина

5. Если гемолиз отсутствовал, а после встряхивания пробирки эритроциты образовали гомогенную суспензию, добавьте 2 капли 10% раствора желатина, подогретого до разжижения, и тщательно смешайте.
6. Инкубируйте пробирку при 46-48о 10 мин на водяной бане или 30 мин в суховоздушном термостате.
7. Добавьте 5-8 мл физиологического раствора и 1-2 раза осторожно переверните закрытую пробирку для перемешивания.
8. Определите наличие агглютинации, просматривая пробирку на свет невооруженным глазом или через лупу.

Не используйте желатин, если он не застывает в холодильнике, мутный или образует хлопья. Не замораживайте желатин. Раствор желатина не должен вызывать неспецифическую агглютинацию, поэтому каждая серия желатина должна быть проверена в контроле с несенсибилизированными эритроцитами.

При необходимости срочной трансфузии можно ограничиться только стадиями 1-4 пробы на совместимость. В этом случае допускается также проведение теста на индивидуальную совместимость на плоскости, путем смешивания 1 капли сыворотки реципиента с каплей эритроцитов донора (соотношение сыворотки и крови должна быть около 5:1). В такой постановке проба на индивидуальную совместимость сводится фактически к выявлению совместимости только по системе АВО.

Донор считается совместимым, если ни на одной стадии пробы на индивидуальную соместимость не наблюдается ни гемолиза, ни агглютинации. Наличие их свидетельствует о присутствии в сыворотке реципиента антител к эритроцитам предполагаемого донора. Таким реципиентам необходимо переливать эритроциты, не содержащие антигенов, против которых направлены антитела. Следует помнить, что проба на индивидуальную совместимость не дает информации о специфичности антител в сыворотке реципиента. Установить их специфичность можно только в исследованиях с панелью типированных эритроцитов.